Добавить в ваш список желаний?

Доставим в ваш город , бесплатная доставка на отделение Новой Почты от 1199 грн.

Безопасная мгновенная оплата заказа онлайн через Приват24 с комиссией в 1% или наличными при получении.

Мы подобрали редкие экзотические сорта удивительных традиционных напитков со всего мира. Уверены, вы будете в восторге - заказывайте и сделайте свою жизнь ярче!

На данный момент в магазине находится:
113
посетитель(ей)

Катуаба: ценные свойства, состав, польза дерева Trichilia catigua (catuaba) - 1 часть RSS 2.0

Катуаба: ценные свойства, состав, польза дерева Trichilia catigua (catuaba) - 1 часть

Антихолинэстеразное действие, антиоксидантные и антифатичные (тонизирующие) свойства катуабы Trichilia catigua (catuaba)

Введение


Trichilia catigua A. Juss. (Meliaceae) - это вид растения, известный как катуаба. Он используется в народной медицине для снятия усталости и стресса, при борьбе с импотенцией и для улучшения памяти. Флавалиньяны, флаван-3-олы и флавоноиды - основные фитохимические компоненты, которые были идентифицированы в коре катуабы. Именно они и обеспечивают ее антиоксидантными свойствами. Доклинические исследования экстрактов T. catigua выявили многие фармакологические свойства, такие как противовоспалительное, антидепрессантное, антиноцицептивное действие. Экстракт положительно воздействует на память, выступает хорошим нейропротектором при ишемии и окислительном стрессе. Это исследование было проведено для сравнения химического состава, уровеня антиоксидантного и антихолинэстеразного воздействия in vitro (в лабораторных условиях) четырех разных видов экстрактов катуабы. Второстепенная цель эксперимента - выбрать наиболее эффективный вид экстракта при исследовании in vivo (в естественных условиях) на примере грызунов (оценивая их уровень стресса, уровень усталости и состояние памяти).

Средства и методы

Экстракты на основе гексана, хлороформа, водно-спиртовой и водный экстракт из коры Trichilia catigua анализировали с помощью оборудования RPHPLC-DAD-ESI-MS / MS. Антиоксидантные свойства оценивали с помощью анализа на уровень 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH) и на скорость ингибирования (угнетения выделения) радикалов ацетилхолинэстеразы методом Эллмана с некоторыми изменениями. Исследования in vivo (оценка уровня стресса, уровня усталости и состояния памяти) проводились на взрослых самцах мышей и крыс, которым вводили водно-спиртовой экстракт в дозах 25-300 мкг/кг (перорально).

Результаты

В результате экспериментов было подтверждено наличие цинхонаинов IIa, Ia и Ib в качестве основных компонентов в четырех экстрактах. Тогда как процианидины были обнаружены только в водно-спиртовом экстракте. Антиоксидантное и антихолинэстеразное воздействие наблюдалось при введении всех экстрактов. Причем наибольший уровень влияния (рост показателей уровня радикалов DPPH и ускорение ингибирования радикалов ацетилхолинэстеразы соответственно) был обнаружен при введении водно-спиртового экстракта (с показателями EC50 = 43 мкг / мл и IC50 = 142 мкг / мл). Введение лабораторным животным водно-спиртового экстракта не уменьшало негативные признаки иммобилизационного стресса у крыс (на фоне перемещения) и признаки стресса при охлаждении, не устраняло вызванную скополамином амнезию у мышей. Однако введение мышам водно-спиртового экстракта частично снижало усталость, вызванную физическими нагрузками на беговой дорожке. При повышении дозы экстракта катуабы увеличивалась спонтанная двигательная активность, и росла сила хвата после принудительных упражнений (p <0,05) span="">

Выводы

Эти данные подтверждают то, что водно-спиртовой экстракт является наиболее подходящим вариантом экстракции растения, и частично оправдывает использование катуабы (T. Catigua) в народной медицине в качестве антифативного средства (для снятия усталости, прибавления сил и выносливости).

Краткое содержание в графической форме

Исследования катуабы

Водно-спиртовой экстракт катуабе (Trichilia catigua) проявляет антиоксидантное и антихолинэстеразное дейсвие in vitro (в лабораторных условиях) и снижает усталость, вызванную принудительными упражнениями.

Введение

Есть растения, которые используют для поддержания хорошего состояния здоровья и высокого уровня умственной деятельности в преклонном возрасте. Они помогают бороться с такими симптомами старения как нарушения памяти, быстрая утомляемость и общая слабость. Гуарана (Paullinia cupana Kunth), муира пуама (Ptychopetalum olacoides Benth.), N?-de-cachorro (Heteropterys tomentosa A. Juss.), дамиана (Turnera diffusa Willd. Ex Schult.) и катуаба (Trichilia catigua A. Juss.) часто используются для этих целей в Бразилии. В литературе встречается много примеров таких действенных веществ, особенно полифенольных соединений, с хорошими антиоксидантными свойствами. Ноотропы и препараты, улучшающие мозговую активность, воздействуют в основном на холинергическую систему и уровень ферментов ацетилхолинэстеразы (AChE). Как свидетельствует опыт, добиться понижения уровня AchE возможно, применяя муиру пуаму и гуарану, два бразильских вида растений, которые использует местное население, чтобы улучшить когнитивные функции. С этой целью они применяют также и катуабу (Trichilia catigua).

Катуаба Trichilia catigua (Meliaceae) — это вид растения из Южной Америки, также известный как catuaba, tatuaba и catigu?, которое используется в народной медицине в качестве тонизирующего средства для устранения усталости, борьбы со стрессом и импотенцией, при нарушениях памяти. Подобные свойства типичны для адаптогенных растений, которые применяются для устранения последствий стресса, улучшения физического состояния, повышения уровня умственной деятельности, как у здоровых людей, так и у людей с проблемами со здоровьем. Самый распространенный способ приготовления лекарственного средства из этих растений - «гаррафада» (размачивание коры растений в алкогольных напитках, обычно с 38-48% содержанием спирта). Есть много и других видов растений со свойствами аналогичными катуабе. Но в большинстве доступных коммерческих продуктов используют кору именно катуабы (T. Catigua). В коре катуабы (T. Catigua), среди других фитохимических компонентов, были обнаружены: флавоноиды, танины, алкалоиды, сапонины. В коре катуабы в высокой концентрации содержаться также полифенолы, такие как флаван-3-олы (процианидин B2, эпикатехин, катехин), флавалиньяны (цинхонайны Ia, Ib, IIa, IIb) и производные фенилпропаноидов (хлорогеновая кислота). Основные компоненты катуабы (T. Catigua) продемонстрировали сильное антиоксидантное воздействие. Это особенно важно в процессе лечения острых и хронических невропатологических заболеваний, для предотвращения повреждения клеток, вызванного окислительным стрессом. В доклинических исследованиях экстрактов катуабы (T. Catigua) были установлены многие ее фармакологические свойства, к примеру, противовоспалительные и антиноцицептивные. Кроме этого, растение можно использовать в качестве антидепрессанта, для улучшения памяти, как нейропротектор при ишемии и окислительном стрессе. Антиноцицептивные свойства, и свойства, схожие с антидепрессантами, обусловлены главным образом дофаминергическим действием. Это было описано в коммерческом препарате, содержащем экстракты катуабы (T. Catigua), гуараны (Paullinia cupana), муиры пуамы (Ptychopetalum olacoides) и имбиря аптечного (Zingiber officinale Roscoe).

Даже после того как были выявлены многие биологически активные фармакологические свойства экстракта катуабы (T. Catigua), его возможности, схожие с адаптогенными растениями, не были полностью оценены. Таким образом, данное исследование нацелено на сравнение in vitro (в лабораторных условиях) химического состава, антиоксидантных и антихолинэстеразных свойств в четырех разных видах экстракта катуабы. Наша цель также – выбрать наиболее действенный вид экстракта in vivo (в естественных условиях) на примере грызунов (оценивая их уровень стресса, уровень усталости и состояние памяти).


Средства и методы

Подготовка растительного материала и приготовление экстрактов

Подготовка растительного материала и экстрактов коры катуабы (T. Catigua) была проведена Santos Flora с соблюдением правил контроля качества. Экстракты были приготовлены с использованием 10% материала растительного происхождения в растворителях ПА (компании Synth, Diadema, Brazil). Водный экстракт получили из отвара (50 г. растения и 500 мл. кипящей воды); водно-спиртовой экстракт получили путем турболиза (100 г. коры в 1 л. этанола: с содержанием воды 50%, все интенсивно перемешали); экстракты хлороформа и н-гексана были приготовлены путем мацерации (25 г. растения замачивали в 250 мл. растворителя (хлороформ, н-гексан) на протяжении четырех дней при комнатной температуре, далее поддавали 50-минутному влиянию ультразвука. Экстракты фильтровали, выделяли концентраты с помощью рота-испарителя, и затем сушили в вытяжном шкафу (экстракты хлороформа и гексана) или лиофилизировали (водный и водно-спиртовой экстракты). Процент выхода экстрактов составил 15,25 (водно-спиртовой), 13,52 (водный), 1,98 (хлороформ) и 1,76 (гексан). Все экстракты анализировали с помощью прибора ВЭЖХ-DAD-ESI-MS / MS (HPLC-DAD-ESI-MS/MS) для получения их полных фитохимических характеристик.

Анализ фитохимических характеристик

Тонкослойная хроматография (ТСХ)

Четыре вида экстракта были исследованы с помощью ТСХ с использованием пластин с силикагелем (толщина слоя 200 мкм, компании Merck). Экстракты растворяли в смеси метанола и хлороформа (1:1). ТСХ проходила с заменой составляющих: хлороформ – метанол - вода (65:35:10, об./об./об.). Пластины визуализировали при помощи УФ-облучения с длиной волн 254 и 365 нм и путем распыления 5%-ного раствора ванилина в 10%-ном растворе HCl в этаноле (компании Synth, Diadema, Brazil) (об./об.) с последующим нагреванием пластины. Флаванолы (конденсированные дубильные вещества, мономеры, димеры) реагируют на ванилин в кислой среде. Получается красный аддукт (образование). Соединения также были обнаружены путем распыления 1% спиртового раствора с FeCl3 (компании Synth, Diadema, Brazil).


Метод RPHPLC-DAD-ESI-MS / MS

Метод RPHPLC-DAD-ESI-MS / MS, с помощью вакуумной ионной ловушки проводился аппаратом DADSPD-M10AVP (компании Shimadzu). Этот прибор оборудован детектором фотодиодной матрицы и подключен к системе Amazon Speed ??ETD (компании Bruker Daltonics). Данная система состоит из двух насосов модели LC-20 AD, детектора диодной матрицы модели SPD-20A, колоночного термостата модели CTO-20A и автоматического инжектора модели SIL 20 AC (компании Shimadzu Corporation, Киото, Япония). Мacс-спектрометрический течеискатель (прибор, принцип действия которого заключается в выделении нужного вещества посредством разделения ионов вещества по отношению их массы к заряду) – квадрупольная вакуумная ионная ловушка, оборудованная ионизационным источником с атмосферным давлением. Прибор контролировался с помощью интерфейса электрораспылительной ионизации, который работал в режиме полного сканирования масс-спектров MS / MS. Все процессы, изменения и анализ данных были проведены благодаря системному контроллеру модели CBM-20A (компании Shimadzu). Воду высокой степени очистки для ВЭЖХ (высокоэффективной жидкостной хроматографии) получили методом пропускания дистиллированной воды через систему Milli-Q (компании Millipore, Waters, Milford, MA, USA). Экстракты (3,33 мкг. / мл.) растворяли в смеси такой воды и метанола (1:1), пропускали через фильтр PFTE (0,45 мкм.). Затем в систему ВЭЖХ вводили аликвотную пробу (нужную частицу) (размером 30 мкл). Спектральные УФ-данные всех фрагментарных пиков были собраны при длине волн в диапазоне 240-400 нм, а хроматограммы флаванолов регистрировались при излучении в 280 нм. Разделения вещества на отдельные компоненты удалось добиться в фазе обратного вращения на приборе Luna Phenomenex – модели C18 RP-18 (тех. характеристики 4,6 ? 250 мм, 5 мкм, компании Hewlett Packard), оснащенном предохранительной колонкой. Подвижную фазу проводили используя элюент А (растворитель) (0,1% водный раствор муравьиной кислоты) и элюент В (метанол) (компании Merck, Darmstadt, Germany). Их подавали непрерывным потоком с силой 1,0 мл. / мин. при постоянной температуре в печи - 40 ° С. Использовался следующий алгоритм элюирования: 0 минут - (20% В), 10 минут - (30% В), 20 минут - (50% В), 30 минут - (70% В), 40 минут - (90% В ), 45 минут - (40% B). Завершающий этап - стабилизация к исходным условиям (20% B) для уравновешивания показателей колонки и подготовка к анализу последующего образца.


Параметры оборудования были установлены следующим образом: напряжение источника электрораспыления ионов - 38 V, капиллярное (поверхностное) напряжение - 4500 V, напряжение на торцевой пластине - 500 V, температура капилляров (поверхностей) - 300 ° С. Гелий использовался в качестве распыляемого газа для соударений, а азот - в качестве газа-увлажнителя. Распыление сопровождалось обработкой оболочек газообразного коаксиального азота под давлением 40 фунтов на квадратный дюйм. Процесс десольватации (высушивания) был ускорен благодаря использованию противотокового азота (сухого газа), подача которого была установлена с частотой 9,0 л. / мин. Спектры были определены по отношению массы частиц к заряду (m/z) в диапазоне от 100 до 1200 массовых единиц. При этом разрешающая способность оборудования была равна 30 000, использовалась обычная линза с частотой сканирования - 110,0 V. Составляющие были выделены с использованием автоматической программы определения масс-спектров MS / MS. Все масс-спектры (характеристики компонентов), были получены способом диссоциации с гелием - газом для соударений. Разделение на частицы происходило при напряжении от 0,5 до 1,3 V. Появление каждого отдельного масс-спектра проверялось по крайне мере 10-ю сканированиями. Выделение компонентов было основано на стандартных принципах фрагментации. Показатели также сравнивали с данными MS, которые были получены в предыдущих исследованиях с разными видами. Кроме этого, данные также искали в базах масс-спектров: SciFinder Scholar, Phenol-Explorer, ChemSpider и HMDB. Для установки точной молекулярной массы и определения химического состава компонентов проводился анализ HR-ESI-TOF-MS (спектроскопия ионизации распылением в электрическом поле с высокой разрешающей способностью). Спектрометр модели Q-ToF MAXIS 3G - компании Bruker Daltonics состоял из ESI (ГСП - идентификатора оконечной системы)
, мощностью 4500 V, силой распыления азота 4 бар, расходом сухого газа 8 л. /мин., и температурой 200 °C. Разделение на составляющие проводили в колонке с обращенной фазой на аппарате Luna Phenomenex-C18 RP-18 (тех. характеристики 4,6 ? 250 мм, 5 мкм, компании Hewlett Packard), оснащенном предохранительной колонкой. Подвижную фазу проводили, используя элюент A (0,1% водный раствор муравьиной кислоты) и элюент В (метанол), которые подавали непрерывным потоком с силой 1,0 мл. / мин. при постоянной температуре в печи при 40 ° С. В экспериментах, которые проводились на спектрометре модели Q-ToF использовали те же условия хроматографии. Расчеты выполнялись с применением высокоточного калибровочного квадратичного алгоритма.

Тесты in vitro (в лабораторных условиях)

Анализ DPPH (с выделением свободных радикалов)

Схема проведения анализов была основана на исследованиях, описанных в Duarte-Almeida et al. с некоторыми изменениями. Для получения абсорбции в промежутке 0,8 и 0,99 при излучении 517 нм. готовили спиртовой раствор 2,2-дифенил-1-пикрилгидразила (DPPH) (компании Sigma, St. Louis, MO, USA). 100 мкл каждого экстракта, разбавленного этанолом (компании Synth, Diadema, Brazil) с первоначальной концентрацией 0,004, 0,01, 0,04, 0,1, 0,4 и 1,0 мкг. / мл., капали в емкости. А после добавления 900 мкл. DPPH емкость помещали в спектрофотометр (компании PG Instruments LTD, Лестершир, Соединенное Королевство) и фиксировали полученные данные в течение 2 минут при излучении 517 нм. Этанол (растворитель, связывающее вещество) использовался в качестве тестируемого образца, а рутин (компании Acros Organics, New Jersey, США) в качестве контрольного образца для проверки. Процент выделения радикала (S) в DPPH рассчитывали по формуле: SDPPH = [(Ac - As) / Ac] ? 100, где Ac = выделение для контрольного образца и As = выделение для тестируемого образца. Концентрацию каждого экстракта, которая превышает 50% EC50 в DPPH, рассчитывали линейной регрессией (% выделения по сравнению с конечным результатом), используя среднее значение, полученное при проведении анализа 4 раза.

Активность ацетилхолинэстеразы

Угнетение выделения AChE определяли спектрофотометрически на основе метода Эллмана, как ранее сообщалось в Padilla et al. с незначительными изменениями. На микропластину помещали 20 мкл. экстрактов катуабе T. catigua в разных концентрациях (0,125, 0,25, 0,5, 1,0, 2,0 и 4,0 мкг / мл). Далее создавали фосфатный буфер (0,1 М, pH 8,0) и капали смесь из 10 мкл. ацетилхолинэстеразы (1 ед. / Мл) (компании Sigma, St. Louis, MO, USA ) и 160 мкл 5,5-дитиобис-2-нитробензойной кислоты (DTNB, реагент Эллмана) 0,33 мМ (Sigma, St. Louis, MO, USA), а потом инкубировали при комнатной температуре в течение 10 минут. Затем добавляли 10 мкл. ацетилтиохолинового йодида (20 мМ) (компании Sigma, St. Louis, MO, USA). Пластину сразу помещали в считыватель данных с микропластин (компании BioTek Instruments, Inc., Winooski, VT, USA). Гидролиз ацетилтиохолинового йодида приводит к получению уксусной кислоты и тиохолина, который реагирует с DTNB, вырабатывая анионную 5-тио-2-нитробензойную кислоту. Этот процесс происходил при излучении в 412 нм. на протяжении 20 минут. Ривастигмин (Exelon®) от компании Novartis Farmac?utica SA (Barber? del Vall?s, Испания) использовался в качестве контрольного образца. Процент ингибирования радикала (I) в AChE рассчитывался по формуле: IAChE = [(Ac-As) / Ac] ? 100, где Ac = поглощение для контрольного образца и As = поглощение для тестируемого образца. Концентрацию каждого экстракта, который ингибирует более 50% активности IC50 в AChE (рассчитывали линейной регрессией (% ингибирования по сравнению с конечным результатом), используя среднее значение, полученное при проведении анализа 3-4 раза.


Изменения в поведении при использовании водно-спиртового экстракта

Подготовка животных

В эксперименте изучали изменения в поведении самцов мышей-альбиносов породы Swiss (30-50 г.) и самок крыс породы Wistar (300-450 г.), возрастом 3-4 месяца. Подопытных взяли из нашего вивария (факультет психобиологии, UNIFESP). Их разместили в комнатах, где постоянно поддерживалась температура воздуха на уровне 21 ± 2 °C. Создали режим дня: 12 ч - день, 12 ч - ночь. Обеспечили фильтрованной водопроводной водой и пищевыми продуктами (компании Nuvilab, Brazil), которые они могли употреблять в любом количестве, за исключением периодов проведения экспериментов. Животных содержали в полипропиленовых клетках (по 4-5 животных) с сосновой стружкой в ??качестве гигиенического наполнителя. Подопытных методом случайной выборки разделили на группы и вводили через желудочный зонд (перорально) воду (как контрольный образец) или водно-спиртовой экстракт, разведенный водой (из расчета 0,1 мкл. на 10 г. массы тела (мышей) или 0,1 мкл. / 100 г. (крыс). Животные подвергались эвтаназии в камере СО2 или обезглавливались (при тестировании уровня стресса на фоне иммобилизации). Все процедуры соответствовали Международным принципам биомедицинских исследований животных и были одобрены Комитетом по этике UNIFESP (Comiss?o de ?tica no Uso de Animais, из Университета Федерал Сан-Паулу, Сан-Паулу, Бразилия) - протокол № 0752/07.


Оценка двигательной активности

Влияние водно-спиртового экстракта T. catigua в дозах 50 и 500 мкг. / кг. (перорально) на двигательную активность животных оценивали на ротароде (оборудование, в котором создается вращение, заставляющее грызунов бежать) и в клетках с множеством препятствий и приспособлений, вынуждающих грызунов быть активными. Это было необходимо для того, чтобы проверить, вызывают ли экстракты в высоких дозах нарушения в работе опорно-двигательного аппарата или проблемы с координацией движений. Мышей помещали в клетки из плексигласа размером 47,5 см ? 25,7 см ? 20,5 см, в каждую - группу из 10 особей. В каждой клетке устанавливали парами 16 фотоэлектрических луча, распределенных по горизонтальной оси (компании Opto-Varimex, Columbus Instruments, Columbus, OH). Передвижения и активность подопытных фиксировались благодаря установленным фото лучам каждые 30 минут в течение всего 120-минутного эксперимента, как описано в Bezerra et al.. Координацию движений оценивали в ротаровом аппарате (компании AVS Projects, Сан-Паулу, Бразилия) при скорости 12 об. / мин. перед применением экстрактов (контрольные данные) и спустя 30, 60 и 120 минут после введения. Мы тестировали мышей, предварительно выбранных за 24 часа до эксперимента, путем исключения тех, которые не способны выдержать испытание хотя бы 60 с.


Уровень стресса на фоне иммобилизации и охлаждения

Группам крыс, по 9-10 особей, вводили перорально водно-спиртовой экстракт T. catigua (25 и 250 мкг. / кг.) или воду (контрольный образец показателей) в течение 14 дней. С восьмого дня начали создавать необходимые условия, чтобы вызвать стрессовое состояние у подопытных. Животных изолировали в акриловой клетке на 2 часа утром (8-10 ч.), а затем помещали в охлажденную камеру (10-13 °С) на 2 часа днем ??(16-18 ч.) с 8 по 13-й день. Затем животных изнуряли голодом на протяжении 20 часов, а на 14-й день их извлекали, сажали в проволочную клетку и помещали в охлажденную камеру на 2 часа, как описано в Mendes et al.. После этого животных умертвляли обезглавливанием, а их кровь собирали для измерения уровня адренокортикотропного гормона (АКТГ) в лаборатории клинического анализа и определения уровня кортикостерона с помощью радиоиммуноанализа в соответствии с инструкциями производителя (компании MP Biomedicals, Santa Ana, CA, USA). Желудок также немедленно удаляли, чтобы оценить степень и индекс изъязвления (поражения поверхности внутренней оболочки желудка), в соответствии с ранее описанными шкалами. Вместе с этим, также были расчленены и взвешены с помощью аналитических весов надпочечники, тимус и селезенка. Дополнительная (контрольная) группа крыс, что не подвергалась стрессу, получала воду во время проведения теста. Их показатели использовались в качестве образца - нормальный уровень гормонов и вес тканей.

Принудительные упражнения на беговой дорожке

Силу сопротивления и уровень усталости оценивали с помощью беговой дорожки Exer 3/6 (компании Columbus Instruments, Columbus, OH, USA). Тест проходил в следующей форме: 3 минуты при скорости 5 м. / мин. для разогрева, а затем увеличение скорости на 3 м. / мин. каждую минуту до достижения скорости 20 м. / мин. После этого скорость повышали на 2 м. / мин. каждую минуту до достижения скорости в 26 м. / мин. А затем увеличивали на 1 м. / мин. каждую минуту. Животное считалось истощенным, когда оно отказывалось бегать даже тогда, когда к нему применяли тактильные стимуляторы. Мыши, которые не смогли достичь скорости 24 м. / мин, были исключены из исследования.

После такой проверки и оценки, животных разделили на группы с аналогичными показателями эффективности (к = 8-10). Им вводили перорально водно-спиртовой экстракт T. catigua (25, 100 и 250 мкг / кг) или воду (в контрольной группе) в течение 7 недель. Их помещали на беговую дорожку на 3-й и 7-й неделе (21 день и 49). Именно в этот период и была зарегистрирована максимальная скорость у каждого животного. Сразу же после достижения истощения мышь забирали с беговой дорожки и из хвоста собирали 25 мкл крови для определения уровня лактата при помощи анализатора L-lactate analyzer (компании YSI 2300 Stat Plus, YSI Life Science, Yellow Springs, OH, USA). После этого показатели животного оценивали с помощью измерителя силы сцепления (компании AVS Projects, Сан-Паулу, Бразилия), а затем помещали в клетку из плексигласа для измерения спонтанной двигательной активности в течение 1 часа, как описано выше. Прочность сцепления измерялась до тренировки (контрольные показатели) и после тренировки (при истощении). Это было необходимо для того, чтобы оценить, как принудительная физическая нагрузка влияет на силу сцепления каждого животного. Оценивание проходило так: животное размещали на сетке и измеряли силу сопротивления в тот момент, когда его тащат за хвост. Самый высокий показатель среди трех измерений записывали. Для определения нормального уровня лактата и силы спонтанной двигательной активности использовали дополнительную (контрольную) группу животных, которым вводили воду и не принуждали к бегу на дорожке.

Тест в условиях испуга

Группам по 9-10 мышей перорально вводили водно-спиртовой раствор T. catigua (50 и 300 мкг / кг) или воду (контрольная группа) на протяжении 3 недель (21 день). В день проведения тестирования животным (за исключением контрольной группы) вводили скополамин (2 мкг / кг, перорально – компании Sigma, Сент-Луис, Миссури, США) разведенный 0,9% солевым раствором, спустя 30 мин после введения экстракта. А через 30 минут помещали каждую особь отдельно в специально приготовленную клетку, в которой были установлены визуальные раздражители. Через 2 мин привыкания лапы животного поражали тремя разрядами электрического тока (силой 0,3 мА, длительностью 1 с, с интервалом 10 с). Мышей возвращали в их привычные клетки, а через 24 часа помещали опять в подготовленную клетку, без каких-либо раздражителей и стимуляторов. На протяжении 5 мин их охлаждали.


Рекомендуемые товары

Голубой лотос (Nymphaea caerulea) (лепестки цветов/соцветия) в/с
310 грн.
Муира Пуама (Ptychopetalum olacoides)
150 грн.
Мукуна Жгучая (Mucuna pruriens)
425 грн.
Лапачо (Pau d'Arco) молотый/кусочками
150 грн.
Готу Кола (Centella asiatica)
220 грн.
Кава Кава (Piper Methysticum) Вануату
350 грн.
Ашваганда (Withania somnifera) (молотый корень)
225 грн.

Рекомендуемые прочитать

Кратом в медицине – применение, польза, эффекты, отзывы
Масло Орегано: широкий спектр применения. Часть 1
Telegram bot
Катуаба: ценные свойства, состав, польза дерева Trichilia catigua (catuaba) - 3 часть
Плагин новой почты работает корректно!

Отзывы

Нет отзывов к этой записи

Написать отзыв


Интернет-магазин энтеогенов www.guarana.in.ua | Кратом(093) 486-81-11uaguarana@gmail.comУкраина

Внимание!

18+

Вам уже исполнилось 18 лет?

Вибачте, вхід на сайт заборонено!